Sunday, December 16, 2018

Glykogen-Synthase - Wikipedia


Glycogen-Synthase ( UDP-Glucose-Glycogen-Glucosyltransferase ) ist ein Schlüsselenzym in der Glykogenese, der Umwandlung von Glucose in Glycogen. Es ist eine Glycosyltransferase (EC 2.4.1.11), die die Reaktion von UDP-Glucose und (1,4- α -D-Glucosyl) n katalysiert, um UDP und (1, 4- α -D-Glucosyl) n + 1 .

Structure [ edit ]

Es wurde viel über den Glykogenabbau geforscht, indem Struktur und Funktion der Glykogenphosphorylase untersucht wurden, dem wichtigsten regulatorischen Enzym für den Glykogenabbau. [2] Andererseits ist viel weniger über die Struktur der Glykogensynthase bekannt, des regulatorischen Schlüsselenzyms der Glykogensynthese. Die Kristallstruktur der Glykogensynthase aus Agrobacterium tumefaciens wurde jedoch mit einer Auflösung von 2.3 A bestimmt. [3] In ihrer asymmetrischen Form wird Glykogensynthase als Dimer gefunden, dessen Monomere aus zwei Rossmann- Domänen falten. Diese strukturelle Eigenschaft wird unter anderem mit verwandten Enzymen wie der Glykogenphosphorylase und anderen Glycosyltransferasen der GT-B-Superfamilie geteilt. [4] Eine neuere Charakterisierung des Saccharomyces cerevisiae (Hefe) -Glycogens Die Synthase-Kristallstruktur zeigt, dass die Dimere tatsächlich zu einem Tetramer interagieren können. Insbesondere werden die Wechselwirkungen zwischen den Untereinheiten durch die α15 / 16-Helix-Paare vermittelt, wodurch Allosteriestellen zwischen Untereinheiten in einer Kombination von Dimeren und aktive Stellen zwischen Untereinheiten in der anderen Kombination von Dimeren gebildet werden. Da die Struktur der eukaryotischen Glykogen-Synthase unter den Spezies hoch konserviert ist, bildet die Glykogen-Synthase wahrscheinlich auch beim Menschen ein Tetramer. [5]

Die Glykogen-Synthase kann in zwei allgemeine Proteinfamilien klassifiziert werden. Die erste Familie (GT3), die aus Säugetieren und Hefen stammt, ist etwa 80 kDa, verwendet UDP-Glukose als Zuckerspender und wird durch Phosphorylierung und Ligandenbindung reguliert. [6] Die zweite Familie (GT5) stammt aus Bakterien und Pflanzen sind etwa 50 kDA, verwenden ADP-Glucose als Zuckerspender und sind nicht reguliert. [7]

Mechanism [ edit ]

Obwohl die katalytischen Mechanismen der Glykogensynthase sind Die Strukturähnlichkeiten der Glykogenphosphorylase an der katalytischen und Substratbindungsstelle sind nicht gut bekannt, was darauf hindeutet, dass der Mechanismus für die Synthese in Glykogensynthase und Glykogenphosphorylase ähnlich ist. [3]

Funktion

Glykogen-Synthase katalysiert die Umwandlung der Glucosyl (Glc) -Einheit von Uridindiphosphat-Glucose (UDP-Glc) in Glucose, die über eine α (1 → 4) glycosidische Bindung in Glycogen eingebaut wird. Da Glykogen-Synthase jedoch einen Oligosaccharid-Primer als Glucoseakzeptor benötigt, ist Glykogen-Synthese von Glycogenin de novo erforderlich. [5]

In einer kürzlich durchgeführten Studie über transgene Mäuse wurde eine Überexpression von Glycogen-Synthase [8] und eine Überexpression von Phosphatase [9] führten beide zu überhöhten Glykogenspeichern. Dies legt nahe, dass die Glykogen-Synthase eine wichtige biologische Rolle bei der Regulierung des Glykogen / Glucose-Spiegels spielt und durch Dephosphorylierung aktiviert wird.

Isozyme [ edit ]

Beim Menschen gibt es zwei paraloge Isozyme der Glykogensynthase:

Isozym Gewebeverteilung Gen
Glykogen-Synthase 1 Muskel- und andere Gewebe GYS1 [10]
Glykogen-Synthase 2 Leber GYS2 [11]

Die Leberenzym-Expression ist auf die Leber beschränkt, während das Muskelenzym weit verbreitet ist. Leberglykogen dient als Speicherpool, um den Blutzuckerspiegel während des Fastens aufrechtzuerhalten, während die Muskelglykogensynthese für die Entsorgung von bis zu 90% der aufgenommenen Glukose verantwortlich ist. Die Rolle des Muskelglykogens dient als Reserve für die Bereitstellung von Energie während Aktivitätsschüben. [12]

Inzwischen spielt das Muskelisozym eine wichtige Rolle in der zellulären Antwort auf die langfristige Anpassung an Hypoxie. Insbesondere induziert Hypoxie nur die Expression des Muskelisozyms und nicht des Leberisozyms. Eine muskelspezifische Glykogen-Synthase-Aktivierung kann jedoch zu einer übermäßigen Ansammlung von Glykogen führen, was nach ischämischen Beleidigungen zu Schäden im Herzen und im zentralen Nervensystem führt. [13]

Regulation [ edit

Die Reaktion wird durch allosterische Effektoren wie Glucose-6-phosphat (Aktivator) und durch Phosphorylierungsreaktionen (desaktivierend) stark reguliert. Durch die allosterische Glucose-6-Phosphat-Aktivierungswirkung kann die Glykogen-Synthase als Glucose-6-Phosphat-Sensor arbeiten. Die inaktivierende Phosphorylierung wird durch das Hormon Glucagon ausgelöst, das von der Bauchspeicheldrüse als Reaktion auf verringerte Blutzuckerwerte ausgeschieden wird. Das Enzym spaltet auch die Esterbindung zwischen der C1-Position von Glucose und dem Pyrophosphat von UDP selbst.

Die Kontrolle der Glykogensynthase ist ein wichtiger Schritt bei der Regulierung des Glykogenstoffwechsels und der Glucosespeicherung. Die Glykogen-Synthase wird direkt durch die Glykogen-Synthase-Kinase 3 (GSK-3), AMPK, Proteinkinase A (PKA) und Caseinkinase 2 (CK2) reguliert. Jede dieser Proteinkinasen führt zu phosphorylierter und katalytisch inaktiver Glykogensynthase. Die Phosphorylierungsstellen der Glycogensynthase sind nachstehend zusammengefasst.

Für Enzyme der GT3-Familie inaktivieren diese regulatorischen Kinasen die Glykogen-Synthase, indem sie am N-Terminus des 25. Restes und am C-Terminus des 120. Restes phosphoryliert werden. [3] Die Glycogen-Synthase wird auch durch die Proteinphosphatase 1 reguliert (PP1), das die Glykogensynthase durch Dephosphorylierung aktiviert. [19] PP1 wird von vier Targeting-Untereinheiten, G M G L PTG und R6, auf das Glykogenpellet abzielt. Diese regulatorischen Enzyme werden durch Insulin- und Glucagon-Signalwege reguliert.

Klinische Bedeutung [ edit ]

Mutationen im GYS1 -Gen stehen im Zusammenhang mit der Glykogen-Speicherkrankheit Typ 0. [20] Defekte in der Enge Die Kontrolle der Glukoseaufnahme und -verwendung hängt auch mit Diabetes und Hyperglykämie zusammen. Patienten mit Typ-2-Diabetes zeigen normalerweise niedrige Glykogenspeicherwerte aufgrund von Beeinträchtigungen der Insulin-stimulierten Glykogensynthese und der Unterdrückung der Glykogenolyse. Insulin stimuliert die Glykogen-Synthase durch Inhibierung von Glykogen-Synthase-Kinasen oder / und Aktivieren der Protein-Phosphatase 1 (PP1) unter anderen Mechanismen. [19]

Modellorganismen [ edit

Modellorganismen wurden verwendet Untersuchung der GYS2-Funktion. Eine konditionale Knockout-Mauslinie mit dem Namen Gys2 tm1a (KOMP) Wtsi [26][27] wurde im Rahmen des International Knockout Mouse Consortium-Programms erstellt - ein Mutagenese-Projekt mit hohem Durchsatz, um interessierte Tiermodelle zu erzeugen und zu verbreiten Wissenschaftler - am Wellcome Trust Sanger Institute. [28][29][30] Männliche und weibliche Tiere wurden einem standardisierten phänotypischen Screen unterzogen, um die Auswirkungen der Deletion zu bestimmen. [24][31] Es wurden 26 Tests durchgeführt und zwei signifikante Phänotypen beschrieben. Homozygote männliche Mutanten zeigten eine beeinträchtigte Glukosetoleranz, wohingegen Frauen eine durch die klinische Chemie bestimmte Abnahme der Glukosespiegel im Blutkreislauf zeigten. [24]

Literatur [ edit

  1. PDB: 1RZU ; Buschazzio A, Ugalde JE, Guerin ME, Shepard W, Ugalde RA, Alzari PM (August 2004). "Kristallstruktur der Glykogensynthase: homologe Enzyme katalysieren die Glykogensynthese und den Abbau". EMBO J . 23 (16): 3196–3205. doi: 10.1038 / sj.emboj.7600324. PMC 514502 . PMID 15272305. ; mit PyMOL gerendert
  2. Buchbinder JL, Rath VL, Fletterick RJ (2001). "Strukturelle Beziehungen zwischen regulierten und nicht regulierten Phosphorylasen". Annu Rev. Biophys Biomol Struct . 30 (1): 191–209. doi: 10.1146 / annurev.biophys.30.1.191. PMID 11340058.
  3. ^ a b 19659061] Buschiazzo A, Ugalde JE, Sheerj W, Ugalde RA, Alzari PM (2004). "Kristallstruktur der Glykogensynthase: homologe Enzyme katalysieren die Glykogensynthese und den Abbau". EMBO J . 23 (16): 3195–205. doi: 10.1038 / sj.emboj.7600324. PMC 514502 . PMID 15272305.
  4. ^ PM Coutinho, Deleury E., Davies GJ, Henrissat B. (2003). "Eine sich entwickelnde hierarchische Familienklassifikation für Glycosyltransferasen". J. Mol. Biol . 328 (2): 307–17. doi: 10.1016 / S0022-2836 (03) 00307-3. PMID 12691742.
  5. ^ a b Palm, DC; Rohwer, JM; Hofmeyr, JH (Januar 2013). "Regulation der Glykogensynthase aus dem Skelettmuskel von Säugetieren - eine vereinheitlichende Sichtweise der allosterischen und kovalenten Regulation". Die FEBS-Zeitschrift . 280 (1): 2–27. doi: 10.1111 / febs.12059. PMID 23134486.
  6. ^ Roach PJ (2002). "Glykogen und sein Stoffwechsel". Curr Mol Med . 2 (2): 101–20. doi: 10.2174 / 1566524024605761. PMID 11949930.
  7. ^ Ball SG, Morell MK (2003). "Vom bakteriellen Glykogen zur Stärke: Die Biogenese des Pflanzenstärkekörnchens verstehen". Annu Rev Plant Biol . 54 (1): 207–33. doi: 10.1146 / annurev.arplant.54.031902.134927. PMID 14502990.
  8. ^ Azpiazu I, Manchester J, Skurat AV, Roach PJ, Lawrence JC Jr. (2000). "Die Steuerung der Glykogensynthese wird von Glukosetransport und Glykogensynthase in Skelettmuskelfasern gemeinsam genutzt." Am J Physiol Endocrinol Metab . 278 (2): E234–43. doi: 10.1152 / ajpendo.2000.278.2.E234. PMID 10662707.
  9. ^ Aschenbach WG, Suzuki Y, Breeden, Prats C, Hirshman, MF, Dufresne, SD, Sakamoto, K., S. Steele, Kim JH, Jing SL, Goodyear LJ, DePaoli-Roach AA (2001). "Die muskelspezifische Proteinphosphatase PP1G / R (GL) (G (M)) ist essentiell für die Aktivierung der Glykogensynthase durch Übung". J Biol Chem . 276 (43): 39959–67. doi: 10.1074 / jbc.M105518200. PMID 11522787.
  10. ^ Browner MF, Nakano K, Bang AG, Fletterick RJ (März 1989). "Menschliche Muskelglykogen-Synthase-cDNA-Sequenz: ein negativ geladenes Protein mit asymmetrischer Ladungsverteilung". Verfahren der National Academy of Sciences der Vereinigten Staaten von Amerika . 86 (5): 1443–7. doi: 10.1073 / pnas.86.5.1443. PMC 286712 . PMID 2493642.
  11. ^ Westphal SA, Nuttall FQ (Februar 1992). "Vergleichende Charakterisierung der Leber- Glykogen-Synthase von Mensch und Ratte". Archiv für Biochemie und Biophysik . 292 (2): 479–86. doi: 10.1016 / 0003-9861 (92) 90019-S. PMID 1731614.
  12. ^ Kollberg G., Tulinius M., Gilljam T., Ostman-Smith I., Forsander G., Jotorp P., Oldfors A., Holme E. (Oktober 2007). "Kardiomyopathie und körperliche Unverträglichkeit bei Muskelglykogen-Speicherkrankheit 0". Das New England Journal of Medicine . 357 (15): 1507–14. doi: 10.1056 / NEJMoa066691. PMID 17928598.
  13. ^ Pescador, N; Villar, D; Cifuentes, D; Garcia-Rocha, M; Ortiz-Barahona, A; Vazquez, S; Ordoñez, A; Cuevas, Y; Saez-Morales, D; Garcia-Bermejo, ML; Landazuri, MO; Guinovart, J; del Peso, L (12. März 2010). "Hypoxie fördert die Ansammlung von Glykogen durch Hypoxie-induzierbaren Faktor (HIF) -vermittelte Induktion der Glykogensynthase 1". PLOS ONE . 5 (3): e9644. doi: 10.1371 / journal.pone.0009644. PMC 2837373 . PMID 20300197.
  14. ^ a b Huang TS, Krebs EG (April 1977). "Aminosäuresequenz einer Phosphorylierungsstelle in der Skelettmuskelglykogen-Synthetase". Biochem. Biophys. Res. Commun . 75 (3): 643–50. doi: 10.1016 / 0006-291X (77) 91521-2. PMID 405007.
  15. ^ a b Proud CG, DB Rylatt, Yeaman SJ, Cohen P (August 1977). Aminosäuresequenzen an den zwei Stellen auf Glycogensynthetase, die durch cyclische AMP-abhängige Proteinkinase und deren Dephosphorylierung durch Proteinphosphatase-III phosphoryliert sind. FEBS Lett . 80 (2): 435–42. doi: 10.1016 / 0014-5793 (77) 80493-6. PMID 196939.
  16. ^ Rylatt DB, Cohen P (Februar 1979). Aminosäuresequenz an der Stelle der Glykogen-Synthase des Kaninchen-Skelettmuskels, phosphoryliert durch die endogene Glykogen-Synthase-Kinase-2-Aktivität. FEBS Lett . 98 (1): 71–5. doi: 10.1016 / 0014-5793 (79) 80154-4. PMID 107044.
  17. ^ Embi N, Parker PJ, Cohen P (April 1981). Eine erneute Untersuchung der Phosphorylierung von Kaninchen-Skelettmuskel-Glykogen-Synthase durch cyclische AMP-abhängige Proteinkinase. Identifizierung der dritten Phosphorylierungsstelle als Serin-7. Eur. J. Biochem . 115 (2): 405–13. doi: 10.1111 / j.1432-1033.1981.tb05252.x. PMID 6263629.
  18. ^ a b Rylatt DB, Aitken A., Bilham T., Condon GD, Embi N., Cohen P. (Juni 1980). Glykogen-Synthase aus dem Skelettmuskel des Kaninchens. Aminosäuresequenz an den Stellen, die durch Glykogen-Synthase-Kinase-3 phosphoryliert sind, und Verlängerung der N-terminalen Sequenz, die die durch Phosphorylase-Kinase phosphorylierte Stelle enthält. Eur. J. Biochem . 107 (2): 529–37. doi: 10.1111 / j.1432-1033.1980.tb06060.x. PMID 6772446.
  19. ^ a b Saltiel AR (2001). "Neue Perspektiven in die molekulare Pathogenese und Behandlung von Typ-2-Diabetes". Cell . 104 (4): 517–29. doi: 10.1016 / S0092-8674 (01) 00239-2. PMID 11239409.
  20. ^ Orho M., Bosshard NU, Buist NR, Gitzelmann, Aynsley-Green, A, Blümel, MC Gannon, Nuttall FQ, Groop LC (August 1998). "Mutationen im Leber-Glykogen-Synthase-Gen bei Kindern mit Hypoglykämie aufgrund einer Glykogen-Speicherkrankheit Typ 0". Das Journal of Clinical Investigation . 102 (3): 507–15. doi: 10.1172 / JCI2890. PMC 508911 . PMID 9691087.
  21. ^ "Daten der klinischen Chemie für Gys2". Wellcome Trust Sanger Institute.
  22. ^ " Salmonella Infektionsdaten für Gys2". Wellcome Trust Sanger Institute.
  23. ^ " Citrobacter Infektionsdaten für Gys2". Wellcome Trust Sanger Institute.
  24. ^ a b 19659061] Gerdin AK (2010). "Das Sanger Mouse Genetics Programm: Charakterisierung von Knockout-Mäusen mit hohem Durchsatz". Acta Ophthalmologica . 88 (S248). doi: 10.1111 / j.1755-3768.2010.4142.x.
  25. ^ Portal für Mausressourcen, Wellcome Trust Sanger Institute.
  26. ^ "International Knockout Mouse Consortium".
  27. ] "Mouse Genome Informatics".
  28. ^ Skarnes, WC; Rosen, B .; West, A. P .; Koutsourakis, M .; Bushell, W .; Iyer, V .; Mujica, A. O .; Thomas, M .; Harrow, J .; Cox, T .; Jackson, D .; Severin, J .; Biggs, P .; Fu, J .; Nefedov, M .; De Jong, P. J .; Stewart, A. F .; Bradley, A. (2011). "Eine bedingte Knockout-Ressource für die genomweite Untersuchung der Mausgenfunktion". Nature . 474 (7351): 337–342. doi: 10.1038 / nature10163. PMC 3572410 . PMID 21677750.
  29. ^ Dolgin E (Juni 2011). Msgstr "Mausbibliothek als Knockout festgelegt". Nature . 474 (7351): 262–3. doi: 10.1038 / 474262a. PMID 21677718.
  30. ^ Collins FS, Rossant J., Wurst W (Januar 2007). "Eine Maus aus allen Gründen". Cell . 128 (1): 9–13. Doi: 10.1016 / j.cell.2006.12.018. PMID 17218247.
  31. ^ van der Weyden L., White JK, Adams DJ, Logan DW (2011). "Das Mausgenetik-Toolkit: Aufschluss über Funktion und Mechanismus". Genome Biol . 12 (6): 224. doi: 10.1186 / db-2011-12-6-224. PMC 3218837 . PMID 21722353.

Externe Links [ edit

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